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11选5 > 商务会议 > 医疗医学会议 > CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班) 更新时间:2019-08-27T17:39:17

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CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)
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CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)

会议时间:2019-09-25 09:00至 2019-09-26 17:00结束

会议地点: 杭州  全季酒店(杭州文三路店)  浙江省杭州市西湖区文三路121号 周边酒店预订

会议规模:50人

主办单位: 北京微旋基因技术有限11选5

发票类型:增值税普通发票
领取方式:现场领取 
发票内容: 会议费 会务费 会议服务费 会议11选5费 11选5费 培训费 
参会凭证:现场凭电话姓名参会

门票名称单价截止时间数量
标准票 包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。 ¥2800.0 2019-09-24 17:00

会议通知

会议内容 主办方介绍


CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)

CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)宣传图

CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班

邀请函

尊敬的         :您好!

CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它改造人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。

随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌等基因组精确修饰,成为科研人员的强大11选5工具,基于CRISPR临床实验已经取得初步成功。

为了让更多11选5的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,并应用的相应的领域研究中。特于2019年9月25日至26日在全季酒店(杭州文三路店)举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。免费获得一份CRISPR/Cas9敲除质粒载体(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共60种)。免费赠送sgRNA离线设计11选5软件(有基因组DNA序列即可设计!学员需自带电脑)。


举办时间:

2019年9月25日至26日

举办地点

全季酒店(浙江省杭州市西湖区文三路121号全季酒店杭州文三路店)

参加对象

从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。

授课方式

理论讲授和实际演练紧密结合。

承办单位:                                

北京微旋基因技术有限11选5

CRISPR 质 粒 清 单

Plant

#50588

pHSN401

CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance

#63142

pRGEB32

(Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.

#51295

pRGEB31

(Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.

Insect

#49330

pAc-sgRNA-Cas9

Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells

C.elegans

#47549

pDD162

Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.

Yeast

#43804

p415

Human Optimized S. pyogenes Cas9

Bateria

#42875

pCRISPR

A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence

#61737

pCRISPomyces-2

Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA

Zebrafish

#47929

pCS2-nCas9n

expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish

Mammalian

#52970

FokI-dCas9

Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells

#61591

PX601

A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.

#42230

PX330

A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.

#48138

PX458

Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

#48139

PX459

Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)

#48140

PX461

Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

#48141

PX462

Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA

#50661

pCW-Cas9

Inducible lentiviral expression of SpCas9

#52963

LentiGuide-puro-Vector

Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.

#52962

lentiCas9-Blast

Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.

#69982

pY010

 Expresses humanized AsCpf1

#19319

pLJM1-EGFP

(Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin

#12260

psPAX2 

Lentivirus package plasmids

#61427

lenti sgRNA(MS2)_zeo

(Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.

#61426

lenti MS2-P65-HSF1_Hygro

lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)

#61425

lenti dCAS-VP64_Blast

3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)

#71814

eSpCas9(1.1)

Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.

#47327

pET-28b-Cas9-His

For in vitro expression and purification of Cas9 protein

#62934

pET-NLS-Cas9-6xHis

Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells

86840

pJH373

mamalian expression of AcrIIA2

84750

Lenti-AsCpf1-Blast

Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.

84752

Lenti_gRNA-Puro

(Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter

79145

pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA

All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells

84745

pY30

Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide

84743

pY094

Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide

84741

pY026

Expresses huAsCpf1 and crRNA guide

79152

pC003

LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning

79150

pC001

Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli

64324

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry

Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide

64222

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6

Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A

64218

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B

Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A

64323

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP

Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide

51023

pSLQ1658-dCas9-EGFP

Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)

64108

pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry

Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells

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会议日程

(最终日程以会议现场为准)


课程安排:

日期

时间

培训内容

授课老师

9月24日

15:00-19:00

培训报到

刘刚

博士

9月25日

9:00-11:30

理论讲解:

一、基因编辑技术简介(三代基因编辑11选5工具)

1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR

二、CRISPR/Cas9基因编辑技术原理

1. CRISPR/Cas9发现历史

2. CRISPR/Cas9作用机制解析

3. CRISPR/Cas9系统改造策略

13:00-17:00

理论讲解

一、sgRNA在线设计构建实战演练(1.靶基因序列查找2.sgRNA在线设计合成)

二、CRISPR/Cas9转染策略:

1.生物转染(慢病毒、腺相关病毒等)

2.物理转染 (电转核酸/RNP、显微注射、基因枪)

3.化学转染 (脂质体、阳离子聚合物)

三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率检测,脱靶检测及解决策略

1、高保真Cas9(espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9)

9月26日

9:00-11:30

理论讲解:

一、CRISPR技术应用解析

1.基因敲除(单基因敲除、多基因敲除、大片段删除、多靶点sgRNA载体构建策略)

2.基因敲入实战演练(gRNA选择、同源臂设计、导入,长片段导入策略/提高基因敲入效率策略,PITCh、HITI)

3.CRISPR在转录调控中的应用(转录激活、转录抑制系统)

4.CRISPR靶基因标记定位

二、CRISPR案例解析

1.基因敲除在小鼠模型构建、植物、细胞、细菌、真菌等中的应用案例解析

2.基于CRISPR的全基因组基因敲除高通量筛选策略

3.基于CRISPR的全基因组转录激活/抑制高通量筛选策略

三、CRISPR/Cas9与基因沉默技术(siRNA、shRNA)系统比较。

13:00-17:00

理论讲解:

一、单碱基基因编辑技术简介及在基因治疗中的应用

1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统4.单碱基基因编辑脱靶克服。

二、基因CRISPR的基因检测系统

1、CRISPR-Cpf1系统介绍(DETECTR)

2、CRISPR-C2c2系统介绍(SHERLOCK)

三、CRISPR/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析

1、CRISPR结合免疫检查点抑制剂治疗肿瘤

2、单基因遗传病治疗(DMD、先天性黑朦、地中海贫血等)

3、CRISPR治疗HIV-基因编辑婴儿解析

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会议嘉宾

(最终出席嘉宾以会议现场为准)


刘刚博士

2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。

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参会指南

会议门票 场馆介绍


收费标准

11选5费: 2800元/人,2019年9月10号之前汇款报名可以优惠至:2600元/人。包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。

推荐住宿地点:全季酒店,299元/标间,319元/大床。

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温馨提示
酒店与住宿: 为防止极端情况下活动延期或取消,建议“异地客户”与活动家客服确认参会11选5信息后,再安排出行与住宿。
退款规则: 活动各项资源需提前采购,购票后不支持退款,可以换人参加。

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会议支持:

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    具体折扣标准请参见plus会员页面
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    每消费1元累积1个会员积分。
    仅PC站支持。
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部分参会单位

主办方没有公开参会单位

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